Fluorimetría de barrido diferencial (DSF)

Información rápida sobre la estabilidad de las proteínas, la formulación y las interacciones biomoleculares

¿Qué es la fluorimetría de barrido diferencial?

La fluorimetría de barrido diferencial (DSF, del inglés “Differential Scanning Fluorimetry”) es una técnica biofísica rápida que se utiliza para evaluar la estabilidad conformacional de las proteínas mediante el seguimiento de los cambios en la fluorescencia mientras una muestra se somete a estrés térmico controlado. A medida que aumenta la temperatura, la energía térmica altera la estructura tridimensional nativa de la proteína, lo que expone las regiones internas que se habían ocultado previamente dentro de su núcleo hidrofóbico. 

En la DSF extrínseca tradicional, este despliegue estructural se detecta mediante colorantes indicadores externos que se unirán a regiones hidrofóbicas recién expuestas. La DSF intrínseca sin marcado depende de la fluorescencia natural de los aminoácidos aromáticos, como el triptófano dentro de la proteína. A medida que la muestra se despliega, el aminoácido aromático pasa de un entorno no polar oculto a un entorno polar expuesto, lo que cambia el espectro de emisión de fluorescencia natural de la proteína. 

¿Cómo funciona la fluorimetría de barrido diferencial intrínseca?

La fluorimetría de barrido diferencial intrínseca depende del aminoácido triptófano, que absorbe la luz UV a 280 nm y emite fluorescencia entre 300 nm y 400 nm. 

En una proteína nativa plegada, los residuos de triptófano suelen residir en el núcleo hidrofóbico y emitir luz al máximo alrededor de 330 nm. A medida que el estrés térmico obliga a la proteína a desplegarse, estos residuos enterrados se exponen al ambiente acuoso polar circundante, lo que provoca que el espectro de emisión se mueva hacia 350 nm. 

Mediante el registro de la proporción de estas dos longitudes de onda de emisión (F350/F330) en una rampa de temperatura controlada, el sistema traza una curva de despliegue térmico sigmoidal. El análisis matemático de esta curva identifica el comienzo del despliegue (Ton) y la temperatura de fusión media (Tm), donde se ha desplegado el 50 % de la población de proteínas.

Debido a que una Tm más alta refleja una mayor resistencia a la desnaturalización inducida por calor, la DSF permite a los investigadores clasificar rápidamente las moléculas candidatas, analizar las condiciones del amortiguador y evaluar la estabilidad de candidatos en procesos de desarrollo de medicamentos.

Además, cuando se combina con métodos de dispersión de luz (tales como dispersión de luz estática o dispersión de luz dinámica), la DSF intrínseca ayuda a distinguir entre el despliegue conformacional y la acumulación física, lo que ofrece un perfil de estabilidad integral de una proteína en una solución.

DSF extrínseca frente a intrínseca: comparación rápida

La fluorimetría de barrido diferencial (DSF, del inglés “Differential Scanning Fluorimetry”) mide la estabilidad térmica de la proteína mediante el monitoreo de los cambios conformacionales a medida que aumenta la temperatura. La diferencia entre la DSF extrínseca e intrínseca es básicamente si se agrega o no un colorante indicador.

Característica DSF extrínseca DSF intrínseca
Mecanismo Utiliza un colorante fluorescente agregado (p. ej., naranja SYPRO) que se une a las regiones hidrofóbicas expuestas durante el despliegue. Técnica sin etiquetas que hace seguimiento de los cambios en la fluorescencia nativa de los aminoácidos aromáticos (Trp/Tyr).
Preparación de muestras Requiere incorporación y optimización del colorante. Sin etiquetado; mide las proteínas en su amortiguador nativo.

Limitaciones de la DSF extrínseca:

  • Interferencia del colorante: Los colorantes extrínsecos se pueden unir al estado nativo de proteínas cambiando artificialmente la temperatura de fusión medida, lo que causa resultados deTm falsos.
  • Incompatibilidad del amortiguador y el detergente: Los aditivos hidrofóbicos pueden unirse al colorante directamente, lo que produce un alto ruido de fondo y una baja sensibilidad.
  • Alto ruido inicial: Las proteínas que tienen regiones hidrofóbicas en la superficie tienen una señal de fluorescencia inicial alta que ocultará la desnaturalización térmica.

Limitaciones de la DSF intrínseca:

  • Dependencia del residuo aromático: La proteína debe contener residuos de aminoácidos fluorescentes naturales, específicamente triptófano (TRP) o tirosina (Tyr), para generar una señal medible.

Zetasizer Core

Evaluación biofísica de última generación a escala
Zetasizer Core

Cómo se comparan nuestros productos

  • Zetasizer Core

    Evaluación biofísica de última generación a escala

    Zetasizer Core

    Categoría de plataforma

    • Cribado de microplacas de alto rendimiento

    Ventajas principales

    • Estabilidad de varios parámetros, despliegue térmico, tamaño y perfil de estabilidad coloidal en microplacas.

    Tecnologías clave

    • Dispersión de luz dinámica (DLS), dispersión de luz estática lineal (SLS), fluorimetría intrínseca de barrido diferencial (DSF)

    Mediciones de salida principales

    • Estabilidad térmica (Tₘ), inicio de la agregación (Tₒₙₛₑₜ), estabilidad coloidal (B₂₂, kᴅ), diámetro hidrodinámico (dH), peso molecular (kDa)

    Formato y rendimiento

    • Cribado de microplacas estándar de 96, 384 y 1536 pocillos para flujos de trabajo automatizados de alto rendimiento

    Flujos de trabajo objetivo

    • Descubrimiento bioterapéutico, selección de candidatos tempranos, desarrollo de formulación de proteínas y cribado de estabilidad de alto rendimiento

    Modelos incluidos

    • Zetasizer Core-DSF | Zetasizer Core